Причины поражения
Мозаика на огурцах может существовать долгое время, не выдавая себя. Но чтобы инфекция перешла в активную фазу, необходимы особые условия.
В первую очередь, это нарушение температурного режима, резкие перепады жары и холода. Огурцы теплолюбивая культура, чувствительны к холодам, падение температуры воздуха до +13°C оказывает существенное влияние на рост и развитие. Аналогичное влияние оказывает и излишне высокая температура выше +32°C. В обоих случаях растение вынуждено направлять накопленную энергию не на рост, а на выживание. Иммунитет, стойкость к вирусам падает, и ослабленные кусты становятся беззащитны перед атаками вредителей.
Второй причиной появления чувствительности к вирусной болезни, является неравномерный полив. Так, недостаток влаги в почве не дает возможности корням получить нужное количество питательных веществ. Излишний полив, без достаточного рыхления, оставляют огурцы без кислорода. Слабая корневая система поражается инфекционными заболеваниями.
Не менее важными для поддержки оптимального климата считаются влажность воздуха и своевременные подкормки. Сухой горячий воздух в теплице стимулирует потерю влаги растениями. Это значительно обессиливает огуречные кусты. Отсутствие поддержки удобрениями не дают возможности зеленому организму восстановиться. Опасные вредители поражают изначально слабые саженцы.
Но, откуда же берется вирусная инфекция, если соблюдается весь комплекс агротехники? ов и переносчиков вирусов может быть несколько:
- зараженный семенной материал;
- тля, трипсы и другие вредители;
- остатки больных растений, переносимые ветром;
- зараженный инвентарь;
- обилие сорной травы.
Кроме источников, указанных выше, вирус может долгое время скрываться в почве. Если огурцы переболели, и не была проведена должная обработка грунта, не уничтожены больные остатки, то высаженная на этом месте рассада будет поражена вирусом мозаики.
Химические средства для борьбы с мозаикой
Выше уже говорилось о том, что каких-либо эффектных препаратов от мозаики не существует. Единственным спасением от данного вирусного заболевания является профилактика, правильный уход и соблюдение агротехнических правил.
Белая мозаика огурца
Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *
Δ
Профилактика
Реальную помощь для лечения от мозаики могут оказать только грамотные агротехнические и профилактические меры:
Площадка некоторое время не используется, выдерживая карантинный период.
На деревьях
У косточковых и семечковых представителей флоры заболевание выглядит проявлением на коре и ветках трещин, подкожной пятнистостью листвы, искажением конфигурации фруктов с потемнением мякоти.
Все дефекты обернутся скудностью урожая и непригодностью его к употреблению. Особенно подвержена патологии груша.
Заключение диссертации по теме «Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)», Зубарева, Ирина Александровна
ВЫВОДЫ
1. В результате молекулярно-генетического анализа были определены 6 новых изолятов TuMV, принадлежащих к 1 и 5 патотипам вируса, имеющих различное происхождение, вирулентность и характер заражения растений.
2. Получены удвоенные гаплоидные линии 13 генотипов видов В. napus и В. oleracea, обладающих устойчивостью к 6 изолятам TuMV, относящихся к 1 и 5 патотипам.
3. Впервые показано наличие эукариотического фактора инициации трансляции BraA.eIF4E.a у изученных представителей всех видов рода Brassica и отсутствие его изоформ BraA.eIF(iso)4E.a и BraA.eIF(iso)4E.c в геноме В. juncea.
4. В результате сравнения аминокислотных последовательностей локусов BraA.eIF(iso)4E.a и BraA.eIF4E.a у устойчивых к TuMV образцов Brassica выявлены аминокислотные замены i52Gly —> Asp и 4oThr —> Ile, соответственно.
5. Впервые показана возможность передачи TuMV (изолят 12) семенами растений рода Brassica через зародыш семени.
6. В результате анализа полной последовательности кодирующей части генома изолята TuMV 12 показано, что способность передаваться семенами может быть связана с уникальными аминокислотными заменами в последовательностях генов PI (122, 134, 261, 301) и СР (2896).
1.2.5 Заключение
Вирус мозаики турнепса является серьезным негативным фактором в сельском хозяйстве, поражающим ряд культур и приводящим к огромным экономическим потерям. Вирус инфицирует все растения семейства Капустные (Brassicaceae), в том числе такие важные сельскохозяйственные культуры как масличный рапс (В. napus), капуста белокочанная (В. oleráceo), репа, турнепс (В. rapa), горчица. Ситуация осложняется отсутствием эффективных мер борьбы с вирусными заболеваниями. Единственно возможный, перспективный и экологически безопасный способ борьбы с болезнью – создание устойчивых сортов.
В настоящее время известно несколько генов устойчивости к различным штаммам TuMV, но наиболее перспективно открытие и изучение генов, отвечающих за неспецифическую устойчивость к патогену. При анализе аллельного состояния генов устойчивости, а также вариативности по их нуклеотидным последовательностям, приводящим к устойчивости к разным штаммам, используются только чистые линии. Однако масличный рапс -факультативный самоопылитель, перекрестное опыление в разных условиях его выращивания может достигать 30 %, и на создание генетически выровненных чистых линий рапса требуется не менее 8-10 лет, причем метод самоопыления часто приводит к инбредной депрессии. Поэтому в качестве объекта исследований при изучении генов устойчивости масличного рапса целесообразно использовать удвоенные гаплоидные растения, на создание которых требуется от 1 до 2 лет. Одной из технологий получения гаплоидных растений является культура изолированных микроспор. Культура микроспор -простой и доступный метод для создания гаплодиных и удвоенных гаплоидных линий, необходимых для генетических исследований и получения линий – источников устойчивости к ТиМУ.
II МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
2.1 Растения и изоляты вируса
Материалом для исследования вирулентности и агрессивности изолятов TuMV, а также отбора образцов для создания линий – источников устойчивости к TuMV, служили 136 образцов растений семейства Brassicaceae из двух коллекций. Коллекция № 1 состояла из 64 образцов и включала в себя представителей Brassica napus, Brassica oleracea, Brassica juncea, Brassica nigra и Brassica carinata. Образцы собирали из нескольких источников: собственная коллекция, растения, полученные из коллекций научно-исследовательских институтов Японии, Великобритании, Нидерландов и ВНИПТИР (Всероссийский научно-исследовательский и проектно-технологический институт рапса РАСХН, г. Липецк); и поддерживали в лаборатории молекулярной фитопатологии Центра «Биоинженерия» РАН. Коллекция № 2 включала 72 образца, представляющих стержневую коллекцию Brassica rapa ВИРа (Всероссийский институт растениеводства имени H.H. Вавилова). Перечень линий, сортов и гибридов сформированных коллекций представлен в таблице 4.
При составлении материала, использовались следующие источники:
